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产品描述

                                                                                                             成牛血清使用说明 
 
本使用说明适用于下列产品系列:胎牛血清(FBS) 、新生牛血清和小牛血清 
 
牛血清介绍 
 
动物细胞离体培养需要营养丰富的培养基。动物血清通常添加在合成培养基里用于促进动物细胞的正常生长。血清是一种天然的促进细胞生长营养物质,它含有极为丰富、并且生物利用率很高的蛋白质、氨基酸、脂肪、生长引子、维生素、激素、蛋白酶抑制因子以及各种无机微量元素。这些成分可有效地促进细胞的生长。目前
普遍使用的血清种类有胎牛血清(FBS)、新生牛血清、马血清、猪血清和人血清。根据血清应用范围和采集后加工方法的不同,每类动物血清又可制备成不同的血清产品类型,用于各种动物和人细胞的培养。然而,胎牛血清(FBS)被广泛认为是适于细胞培养的动物血清,补充所必需的营养成分。主要是因为FBS富含平衡的天
然生长因子和较低γ球蛋白。除此之外,FBS还可以防止细胞由于pH变化、重金属离子、内毒素和蛋白酶而引起对细胞的损害。 
 
贮存方法 
 
我司的血清是分装在无菌的塑料瓶内,之后冰冻保存。在运输过程中仍保持在冰冻状态。如将血清存放在-10到-40oC度的在冰柜里,可连续保存数年,对血清的植板率没有明显的影响。血清不应存放在无霜冰箱里。反复冰冻融化过程会使血清中的某些物质沉淀,降低血清的使用效果。不适当的贮存将迅速降低血清制品的有效成分和稳定性。 
 
牛血清解冻方法 
 
血清从冰箱取出后应慢慢地解冻。好在4oC低温冰箱里放置一天或直到完全融化为止。如果时间不允许低温解冻, 可参考以下解冻方法: 
1. 将血清从冰箱里取出后,在室温下放置15-20分钟。 
2. 然后将血清放置在37oC水浴槽里。过高温度会导致血清出现浑浊现象。不要让水淹没装有血清的瓶子。 
3. 每隔5分钟左右适当摇晃瓶子,直到完全地解冻为止。 
 
血清解冻后要立即使用。解冻的血清可以在2-8oC条件下存放达2个星期。为了避免 多次解冻/融化血清和长期冷藏,我们建议将没有用完的血清立即分装,然后再冰冻保存,方便以后使用。 
 
血清的热处理 
 
血清是动物血液制品,它通常含有一些补体会诱导一系列的细胞降解反应。经热灭活处理的血清可以减少或消除此不良影响。但不适当的热处理会导致细胞生长缓慢,并时常引起血清中蛋白质和脂类物质在底部形成白色絮状沉淀。在热灭活过程中,定时适当摇动可以减少沉淀现象的发生。 
 
我司为客户提供热灭活的胎牛血清。如果客户愿意自己热灭活各类牛血清,我们建议使用下列优化的灭火方法: 
1. 用上述描述的方法将血清在低温冰箱或室温下解冻。 
2. 在血清解冻时,将一个容器装入适量的水,用于模拟装有血清瓶子在热处理过程中检测瓶内水的温度。容器大小、质地和装水的量好与装血清的瓶子相同或相似。 
3. 待血清彻底解冻时,将含有血清的瓶子放在预热的56oC水浴里,不要将含有血清的瓶子让水淹没或接近瓶子的盖子,以免导致污染。 
4. 在开始加热处理时,要及时使用温度计测定模拟瓶内水的温度。 
5. 在预热期间,每隔3-5分钟要适当摇幌含有血清和水的瓶子,确保瓶内液体 均匀加热。 
6. 一旦模拟瓶内的水温达到55.8±0.5oC时,开始计时,并在此温度范围内热处理30分钟,然后立即放在冰上冷却。 
为防止在热处理过程中由蛋白质变性而导致的浑浊和沉淀现象,热处理时应注意下列事项: 
1. 不要用高于25oC以上的温度加快解冻速度。 
2. 在热处理之前,要使血清彻底融解。 
3. 不要使热处理的温度高于56.3oC 。 
4. 热处理时间不要长于30分钟。 
5. 在加热过程中一定要定时摇动血清。 
成牛血清特点
产品名称:成牛血清  
产地:Biotopped  
规格:500ml/200ml/100ml
产品保存/运输:-5°C~-20°C
产品有效期:两年
Gibco bovine (aka calf serum) serum is collected from prime cattle with an age range of 12-36 months, but typically less than 24 months. All lots are processed and manufactured in New Zealand. Each lot of bovine serum is tested for its ability to support the growth of VERO cells over three subcultures. At each passage, the cells subcultured to the original cell-inoculation density. Results are compared to parallel results obtained using control growth medium containing a previously characterized reference serum.
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